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公司上萬種科研產(chǎn)品,主要供應(yīng)各大科研單位和學(xué)校,是國內(nèi)眾多科研單位的供應(yīng)商。公司嚴把質(zhì)量關(guān),確保每一個出廠產(chǎn)品質(zhì)量合格,讓您買的省心,用得放心。
產(chǎn)品名稱 | 檢測方法 | 規(guī)格 | 貨號 |
植物淀粉含量試劑盒 | 微量法 | 100管/96樣 | CS-01S63585 |
淀粉是植物中糖的主要儲存形式,其含量測定對于評價食品營養(yǎng)價值和調(diào)查植物體內(nèi)糖代謝都有重要意義。
測定原理:
利用80%乙醇可以把樣品中可溶性糖與淀粉分開,進一步采用酸水解法分解淀粉為葡萄糖,采用蒽酮比色法測定葡萄糖含量,即可計算淀粉含量。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計/酶標儀、水浴鍋、可調(diào)式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研缽、冰、濃硫酸(不允許快遞)和蒸餾水。
試劑的組成和配制:
試劑一:液體100mL×1瓶,4℃保存;
試劑二:液體105mL×1瓶,4℃保存;
試劑三:粉劑×1瓶,4℃保存;
淀粉提?。?/span>
1、稱取0.1~0.2g新鮮樣本(建議稱取約0.1g新鮮樣本)于研缽中研碎,加入1mL試劑一,充分勻漿后轉(zhuǎn)移到EP管中,80℃水浴提取30min,3000g,25℃離心5min,棄上清,留沉淀。
2、沉淀中加入0.5mL蒸餾水,放入95℃水浴中糊化15min(蓋緊,以防止水分散失)。
3、冷卻后,加入0.35mL試劑二,25℃常溫提取15min,振蕩3-5次。
4、加入0.85mL蒸餾水,混勻,3000g,25℃離心10min,取上清液待測。
注意:如樣本為淀粉含量較高的干樣,為保證充分提取,可適當減小取樣量,如稱取0.01g~0.02g干樣,加入1mL試劑一,其余提取步驟同上。
測定步驟:
1、分光光度計或酶標儀預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至620nm,蒸餾水調(diào)零。
2、調(diào)節(jié)水浴鍋至95度。
3、工作液的配制:臨用前在試劑三中加入3.75mL蒸餾水后,緩慢加入21.25mL濃硫酸,不斷攪拌,充分溶解,待用;用不完的試劑4℃保存一周;
4、樣本測定:取50μL樣本和250μL工作液至EP管中,95度水浴10 min(蓋緊,防止水分散失),自然冷卻至室溫,取200uL至微量石英比色皿或96孔板中,在620 nm 波長下記錄測定吸光度值A。
淀粉含量計算:
a.用微量石英比色皿測定的計算公式如下
標準條件下測定的回歸方程為y = 5.872x - 0.0295;x為標準品濃度(mg/mL),y為吸光值。
1、按照蛋白濃度計算
淀粉含量(mg/mg prot)=[(A+0.0295)×V1]÷5.872 ÷(V1×Cpr)=0.17×(A+0.0295) ÷Cpr
2、按樣本鮮重計算
淀粉含量(mg/g 鮮重)= [(A+0.0295)×V1] ÷5.872÷(W×V1÷V2) =0.289×(A+0.0295) ÷W
V1:加入反應(yīng)體系中樣本體積,0.05mL;V2:加入提取液體積,1.7 mL;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g
b.用96孔板測定的計算公式如下
標準條件下測定的回歸方程為y = 2.936x - 0.0295;x為標準品濃度(mg/mL),y為吸光值。
1、按照蛋白濃度計算
淀粉含量(mg/mg prot)=[(A+0.0295)×V1]÷2.936 ÷(V1×Cpr)=0.34×(A+0.0295) ÷Cpr
2、按樣本鮮重計算
淀粉含量(mg/g 鮮重)=[(A+0.0295)×V1]÷2.936÷(W×V1÷V2) =0.578×(A+0.0295) ÷W
V1:加入反應(yīng)體系中樣本體積,0.05mL;V2:加入提取液體積,1.7 mL;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g
注意:由于工作液具有強腐蝕性,請謹慎操作。
若吸光值大于1,請將樣本用提取液稀釋后再測定,計算公式中乘以相應(yīng)的稀釋倍數(shù)。
提取液的配置:0.35mL試劑二+1.35mL水。用多少按照此比例配多少。
最低檢測限為10μg/g鮮重或100ng/mgprot。
1. 本產(chǎn)品僅供科研使用。請勿用于醫(yī)藥、臨床診斷或治療,食品及化妝品等用途。請勿存放于普通住宅區(qū)。
2. 為了您的安全和健康,請穿好實驗服并佩戴一次性手套和口罩操作。
原創(chuàng)作者:上海莼試生物技術(shù)有限公司
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