產(chǎn)品目錄

本試劑盒采用特異性結(jié)合病毒DNA的離心吸附柱和獨特的緩沖液系統(tǒng)，病毒DNA提取試劑盒適合于從無細胞體液，包括血漿、血清、腹水、培養(yǎng)細胞上清液、腦脊髓液及尿液等中快速提取高純的病毒DNA。該產(chǎn)品可以滿足絕大多數(shù)的病毒DNA的提取要求，如病毒DNA：HBV（乙肝病毒）和CMV（巨細胞病毒）等等。病毒裂解后，DNA后在高離序鹽狀態(tài)下選擇性吸附于離心柱內(nèi)硅基質(zhì)膜，再通過一系列快速的漂洗－離心的步驟，將鹽、細胞代謝物、蛋白等雜質(zhì)去除，最后低鹽的洗脫緩沖液將純凈的病毒DNA從硅基質(zhì)膜上洗脫。純化后的病毒核酸無雜質(zhì)和PCR抑制劑，可直接適用于PCR、酶切、雜交等分析。

試劑盒組份(50次)：

裂解液DLB—————————20ml

去蛋白液RE————————25ml

漂洗液WB—————————15ml

洗脫緩沖液EB———————15ml

吸附柱AC—————————50個

收集管(2ml)————————50個

產(chǎn)品特點：

1.不需要使用有毒的苯酚等試劑，也不需要乙醇沉淀等步驟。

2.節(jié)省時間，簡捷，單個樣品操作一般可在20分鐘內(nèi)完成。

3.多次柱漂洗確保高純度，提取的病毒DNA純度高，質(zhì)量穩(wěn)定可靠，可適用于各種操作，包括PCR、酶切、雜交等。

操作步驟：(實驗前請先閱讀注意事項)

提示：第一次使用前請先在15ml漂洗液WB中加入60ml無水乙醇，充分混勻，加入后請及時在方框打鉤標(biāo)記已加入乙醇，以免多次加入!

1.200μl血清等體液（需回復(fù)到室溫，不足可用0.9%NaCl或者PBS補足）轉(zhuǎn)入上述1.5ml離心管，加入400μl裂解液DLB,立刻渦旋振蕩充分混勻。

2.室溫(15-25℃)放置10分鐘，每隔5分鐘，振蕩混勻一次。

3.加入450μl無水乙醇，立刻渦旋振蕩充分混勻。如果周圍環(huán)境高于25℃,乙醇需要冰上預(yù)冷后再加入。

4.將上述混合物加入一個吸附柱AC中，（吸附柱放入收集管中）13000rpm離心30-60秒，倒掉收集管中的廢液。如果總體積超過750μl，可分兩次將溶液加入同一個吸附柱AC中。

5.加500μl去蛋白液RE，12000rpm離心30秒，棄廢液。

6.加入500μl漂洗液WB（請先檢查是否已加入無水乙醇!），12000rpm離心30秒，棄廢液，加入500μl漂洗液WB，重復(fù)一遍。

7.將吸附柱AC放回空收集管中，13000rpm離心2分鐘，盡量除去漂洗液，以免漂洗液中殘留乙醇抑制下游反應(yīng)。

8.取出吸附柱AC，放入一個新的離心管中，在吸附膜的中間部位加30-50μl洗脫緩沖液EB（事先在65－70℃水浴中加熱效果更好），室溫放置1分鐘，12,000rpm離心1分鐘。如果想得到較多量的DNA，可將得到的溶液重新加入離心吸附柱中，12,000rpm離心1分鐘。洗脫體積越大，洗脫效率越高。如果需要DNA濃度較高，可以適當(dāng)減少洗脫體積，但是最小體積不應(yīng)少于20μl，體積過小降低洗脫效率，減少DNA產(chǎn)量。

9.DNA可以存放在2-8℃，如果要較長時間存放，可以放置在－20℃。

儲存條件：室溫，有效期12個月。
本制品別名：病毒基因組DNA提取試劑盒

實驗步驟：

(1)實驗開始前將RNA提取液于65℃水浴鍋中預(yù)熱,離心管中加入ME(巰基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)

(2)取約0.8g菌絲體(液體培養(yǎng)獲得的菌絲用真空抽濾即可！固體培養(yǎng)就更好說了),在液氮中迅速磨成精細粉末,裝入50mL離心管,按1g材料8mL的量加入預(yù)熱的RNA提取液,顛倒混勻

(3)65℃水浴3-10 min,期間混勻2-3次

(4)加入等體積的酚(注意是酸酚pH4.5)::異戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)

(5)取上清,等體積的:異戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)

(6)加入1/4V體積10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或過夜)

(7)10,000rpm,4℃離心20min

(8)棄上清,用500ul SSTE溶解沉淀

(9)酚::異戊醇(25:24:1)抽提兩次,:異戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)

(10)加2V體積的無水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上

(11)12,000rpm,4℃離心20 min

(12)棄上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥

(13)加200ul的DEPC處理水溶解

(14)用非變性瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計掃描檢測RNA的質(zhì)量

(在抽提過程中,若蛋白質(zhì)含量或其它的雜質(zhì)還較多,可以增加抽提次數(shù))

操作步驟:

1. 勻漿處理:a.組織將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應(yīng)超過TRIzol體積10℅。

b.單層培養(yǎng)細胞直接在培養(yǎng)板中加入TRIzol裂解細胞，每10cm2面積(即3.5cm直徑的培養(yǎng)板)加1ml，用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應(yīng)根據(jù)培養(yǎng)板面積而定，不取決于細胞數(shù)。TRIzol加量不足可能導(dǎo)致提取的RNA有DNA污染。

c．細胞懸液離心收集細胞，每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol，反復(fù)吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。產(chǎn)品僅用于科研

2．將勻漿樣品在室溫（15-30℃）放置5分鐘，使核酸蛋白復(fù)合物完全分離。

3．可選步驟：如樣品中含有較多蛋白質(zhì)，脂肪，多糖或胞外物質(zhì)（肌肉，植物結(jié)節(jié)部分等）可于2-8℃10000×g離心10分鐘，取上清。離心得到的沉淀中包括細胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。處理脂肪組織時，上層有大量油脂應(yīng)去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。

5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml，劇烈振蕩15秒，室溫放置3分鐘。

6. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層：底層為黃色有機相，上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中，水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。

7. 把水相轉(zhuǎn)移到新管中，如要分離DNA和蛋白質(zhì)可保留有機相，進一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇，室溫放置10分鐘。

8. 2-8℃10000×g離心10分鐘，離心前看不出RNA沉淀，離心后在管側(cè)和管底出現(xiàn)膠狀沉淀。移去上清。

原創(chuàng)作者：上海莼試生物技術(shù)有限公司

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