保存條件:-20℃冰凍保存一年。
工作原理:
在機體內(nèi)部隨時都在發(fā)生著細胞的死亡。傳統(tǒng)上用顯微鏡來觀察細胞的死亡,其特征為核染色質(zhì)的濃縮及碎片的形成。但是這種現(xiàn)象出現(xiàn)的很晚,時間也很短暫。凋亡的特征是內(nèi)源性核酸內(nèi)切酶被激活,細胞自身的染色質(zhì)或DNA 被切割,出現(xiàn)單鏈或雙鏈缺口,并產(chǎn)生與 DNA 斷點數(shù)目相同的3’-OH 末端。末端脫氧核糖核酸轉(zhuǎn)移酶(Terminal deoxynucleotidyl Transferase)可以將地高辛標記的dUTP(DIG-dUTP)標記至 3’-OH 末端,DIG-dUTP 結合在 DNA 斷點部位,可以通過生物標記的抗地高辛抗體(Anti-DIG-Biotin)反應后,再結合鏈酶親和素-熒光素 FITC(SABC-FITC)。FITC 在 490-495nm 激化,在 520-530nm 發(fā)射熒光,呈黃綠色。凋亡的細包核呈黃綠色,從而可以在顯微鏡下觀察到著色的凋亡細胞。
試劑盒內(nèi)容:
1.標記緩沖液(Labeling Buffer)1ml
2.末端脫氧核糖核酸轉(zhuǎn)移酶(TdT,×20)20μl
3.DIG-dUTP(×20)20μl
4.封閉液(Blocking Reagent)4ml
5.生物素化抗地高辛抗體(× 100)20μl
6.SABC-FITC(× 100)20μl
7.Proteinase K(×200)50μl
8.抗體稀釋液 4ml
陽性對照片2張
用戶自備試劑:
1.多聚賴氨酸或APES。
2.0.01M TBS,PH7.5(配法:1L 雙蒸餾水中加入 8.5 克氯化鈉,1.2 克 Tris和 0.45—0.5ml 純乙酸。)
3.DAPI 染色液
4.水溶性封片劑或抗熒光衰減封片劑。
操作步驟:
1.樣品處理
(1)玻片預先用多聚賴氨酸或APES 進行處理。
(2)細胞涂片和冰凍切片:最重要的是及時固定。用 4%多聚甲醛/0.01M PBS(PH7.0---7.6)室溫下固定 30—60分鐘。0.01M PBS洗2分鐘×2次。蒸餾水洗滌 2分鐘×2次。
(3)組織:有條件時應及時固定。常規(guī) 4%多聚甲醛/0.01M PBS(PH7.0---7.6)或10%中性緩沖福爾馬林固定 4 小時以上,石蠟包埋。切片常規(guī)脫蠟入水(脫蠟務必干凈)。
2.標本片加 0.01M TBS 1:200 新鮮稀釋 Proteinase K 37℃消化 1—15分鐘,0.01M TBS洗2分鐘×3次。(細胞涂片和冰凍切片一般不消化或消化 10—60秒鐘。新鮮石蠟切片消化 5-10分鐘。陳舊石蠟切片消化 10-15分鐘)。
3.標本片加標記緩沖液(Labeling Buffer)20μl/片,以保持切片濕潤。按每張切片取 TdT和 DIG-d-UTP 各 1μl,加入 18μl標記緩沖液中,混勻。甩去切片上多余液體后加標記液,20μl/片。置樣品于濕盒中,37℃標記2 小時。
4.0.01M TBS洗2分鐘×3次。
5.加封閉液 50μl/片,室溫 30分鐘,甩掉封閉液,不洗。
6.用抗體稀釋液 1:100 稀釋生物素化抗地高辛抗體:(取1ml抗體稀釋液加生物素化抗地高辛抗體10μl),混勻后 50μl/片加至標本片上。置樣品于濕盒中,37℃反應30分鐘。
0.01M TBS洗2分鐘×3次。
7.用抗體稀釋液 1:100 稀釋 SABC:取 1ml 抗體稀釋液加 SABC 10μl,混勻后 50μl/片加至切片。37℃反應 30分鐘。0.01M TBS洗5分鐘×4次。
8.必要時可用DAPI染色液輕度復染,蒸餾水洗。抗熒光衰減封片劑封片(可用甘油代替)。熒光顯微鏡觀察。
結果判定:
細胞核中有黃綠色顆粒者為陽性細胞,即凋亡的細胞。
注意事項:
1.試劑盒嚴格-20℃存放。
2.初用時如試管底部無可見的試劑,在離心機離心5分鐘,使試劑沉至管底。
3.檢測過程中切勿使樣品干涸。