固定組織RNA提取試劑盒操作步驟:1. 勻漿處理:a.組織 將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應超過TRIzol體積10℅。
b.單層培養(yǎng)細胞 直接在培養(yǎng)板中加入TRIzol裂解細胞,每10cm2面積(即3.5cm直徑的培養(yǎng)板)加1ml,用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據(jù)培養(yǎng)板面積而定,不取決于細胞數(shù)。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA污染。
c.細胞懸液 離心收集細胞,每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol,反復吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。
2.將勻漿樣品在室溫(15-30℃)放置5分鐘,使核酸蛋白復合物完全分離。
3.可選步驟:如樣品中含有較多蛋白質(zhì),脂肪,多糖或胞外物質(zhì)(肌肉,植物結(jié)節(jié)部分等)可于2-8℃10000×g離心10分鐘,取上清。離心得到的沉淀中包括細胞外膜,多糖,高分子量DNA,上清中含有RNA。處理脂肪組織時,上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml,劇烈振蕩15秒,室溫放置3分鐘。
6. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層:底層為黃色有機相,上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中,水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。
7. 把水相轉(zhuǎn)移到新管中,如要分離DNA和蛋白質(zhì)可保留有機相,進一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇,室溫放置10分鐘。
8. 2-8℃10000×g離心10分鐘,離心前看不出RNA沉淀,離心后在管側(cè)和管底出現(xiàn)膠狀沉淀。移去上清。
正常細胞/凋亡細胞/壞死細胞檢測試劑盒是采用DNA探針雙染細胞核的方法檢測細胞的狀態(tài)。染色液A可以透過正常細胞膜,而細胞凋亡后,細胞膜對染色液A的通透性增加,染色液B 不能透過細胞膜,對正常細胞和凋亡細胞不能染色,而對壞死細胞可以染色。用兩種染色液對細胞進行雙染后,使用流式細胞儀或熒光顯微鏡即可對細胞狀態(tài)進行檢測。在雙變量流式細胞儀的散點圖上,這三群細胞表現(xiàn)分別為:正常細胞為低藍色/低紅色(A+/B+),凋亡細胞為高藍色/低紅色(A++/B+),壞死細胞為低藍色/高紅色(A+/B++)。
儲存條件:-20℃避光保存。避免反復凍融。
原創(chuàng)作者:上海莼試生物技術(shù)有限公司